Уфа, Республика Башкортостан, Россия
Уфа, Республика Башкортостан, Россия
УДК 616-022.7 Заболевания, вызываемые бактериями и другими микроорганизмами
Предмет. Трудности терапии воспалительного процесса костной ткани акцентируют внимание исследователей и практикующих врачей на ранней идентификации возбудителей остеомиелита, что является ключом к успешной терапии заболевания. Согласно цитируемым в базе данных The Сocrane Library публикациям, эпидемиология и этиологическая структура остеомиелита претерпевает в последние годы существенные изменения. Цель работы — представить актуальную информацию по этиологически значимым представителям микробной флоры при остеомиелите челюстей. Методология. Проведена поисковая работа с использованием международных научных баз данных PubMed, ScienceDirect, Scopus, Cochrane Collaboration, Elsevier, а также электронных каталогов Elibrary и Cyberleninka по микробиологическим аспектам этиологии остеомиелита челюстей. Результаты. Обзор публикаций продемонстрировал доминирующие позиции представителей рода Staphylococcus в этиологическом спектре хронического остеомиелита. Преобладающим патогеном является S. aureus. Доля инфекций, опосредованных S. epidermidis, S. Saprophyticus составляет в среднем порядка 25% случаев. Доля представителей грамотрицательной флоры Escherichia, Klebsiella, Enterobacter, Citrobacter, Proteus, Providencia, Serratia достигает 23% случаев. Согласно приведенным сведениям, возбудители грамотрицательной инфекции составляют 1/5 часть этиологического спектра хронического остеомиелита. Патогенные нозокомиальные штаммы P. aeruginosa также вовлечены в формирование хронического воспаления при остеомиелите. По результатам опубликованных исследований, более трети случаев хронического остеомиелита опосредовано микробными ассоциациями. В составе последних доминируют S. aureus, S. epidermidis и реже E. faecalis. При этом динамический анализ показал изменчивость микробного состава ассоциаций, что определяет дополнительные трудности в выборе актуальной этиотропной терапии и может стать причиной дальнейшего прогрессирования патологического процесса. Выводы. Реализация эффективных методов терапии нуждается в новых информативных диагностических подходах. Вместе с тем чувствительность рутинных микробиологических анализов недостаточно высока. На современном этапе признана диагностическая ценность молекулярно-генетических методов на основе полимеразной цепной реакции.
обзор литературы, остеомиелит челюсти, этиология, микрофлора гнойных очагов, микробиологический аспект остеомиелита, микробные ассоциации остеомиелита
1. Терехова Р.П., Митиш В.А., Пасхалова Ю.С., Складан Г.Е., Прудникова С.А., Блатун Л.А. Возбудители остеомиелита длинных костей и их резистентность. Раны и раневые инфекции. 2016;3(2):24-30. [R.P. Terekhova, V.A. Mitish, Yu.S. Paskhalova, G.E. Skladan, S.A. Prudnikova, L.A. Blatun. Causative agents of osteomyelitis of long bones and their resistance. Wounds and wound infections. 2016;3(2):24-30. (In Russ.)]. https://doi.org/10.17650/2408-9613-2016-3-2-24-30.
2. Kavanagh N., Ryan E.J., Widaa A., Sexton G., Fennell J., O'Rourke S., Cahill K.C., Kearney C.J., O'Brien F.J., Kerrigan S.W. Staphylococcal Osteomyelitis: Disease Progression, Treatment Challenges, and Future Directions // Clin Microbiol Rev. - 2018;31(2):e00084-17. https://doi.org/10.1128/CMR.00084-17.
3. Conterno L.O., Turchi M.D. Antibiotics for treating chronic osteomyelitis in adults (Review) // Cochrane Database Syst Rev. - 2013;(9):CD004439. https://doi.org/10.1002/14651858.CD004439.pub3.
4. Тимофеев А.А. Руководство по челюстно-лицевой хирургии и хирургической стоматологии. Киев : «Червона Рута-Туре». 2002. [A.A. Timofeev. Guide to maxillofacial surgery and surgical dentistry. Kyiv : "Chervona Ruta-Ture". 2002. (In Russ.)]. https://e-stomatology.ru/pressa/literatura/hirurgia/
5. Миронов С.П., Цискарашвили А.В., Горбатюк Д.С. Хронический посттравматический остеомиелит как проблема современной травматологии и ортопедии (обзор литературы). Гений ортопедии. 2019;25(4):610-621. [S.P. Mironov, A.V. Ciskarashvili, D.S. Gorbatyuk. Chronic post-traumatic osteomyelitis as a problem of modern traumatology and orthopedics (literature review). Orthopedic Genius. 2019;25(4):610-621. (In Russ.)]. https://doi.org/10.18019/1028-4427-2019-25-4-610-621.
6. Клюшин Н.М., Науменко З.С., Розова Л.В., Леончук Д.С. Микрофлора хронического остеомиелита плечевой кости. Гений ортопедии. 2014;(3):57-59. [N.M. Klyushin, Z.S. Naumenko, L.V. Rozova, D.S. Leonchuk. Microflora of chronic osteomyelitis of the humerus. Orthopedic Genius. 2014;(3):57-59. (In Russ.)]. https://cyberleninka.ru/article/n/mikroflora-hronicheskogo-osteomielita-plechevoy-kosti
7. García Del Pozo E., Collazos J., Cartón J.A., Camporro D., Asensi V. Bacterial osteomyelitis: microbiological, clinical, therapeutic, and evolutive characteristics of 344 episodes // Rev Esp Quimioter. - 2018;31(3):217-225. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/29756429/
8. Камека А.Л., Леонова С.Н. Механизмы нарушения процесса регенерации при замещении дефектов костной ткани голени у больных с хроническим травматическим остеомиелитом. Бюллетень ВСНЦ СО РАМН. 2008;62(4):23-32. [A.L. Kameka, S.N. Leonova. Mechanisms of violation of the process of regeneration during the replacement of defects in the bone tissue of the lower leg in patients with chronic traumatic osteomyelitis. Bulletin of VSNC SO RAMS. 2008;62(4):23-32. (In Russ.)]. https://cyberleninka.ru/article/n/mehanizmy-narusheniya-protsessa-regeneratsii-pri-zameschenii-defektov-kostnoy-tkani-goleni-u-bolnyh-s-hronicheskim-travmaticheskim
9. Allison D.C., Holtom P.D., Patzakis M.J., Zalavras C.G. Microbiology of bone and joint infections in injecting drug abusers // Clin Orthop Relat Res. - 2010;468(8):2107-2112. https://doi.org/10.1007/s11999-010-1271-2.
10. Josse J., Velard F., Gangloff S.C. Staphylococcus aureus vs. Osteoblast: Relationship and Consequences in Osteomyelitis // Front Cell Infect Microbiol. - 2015;5:85. https://doi.org/10.3389 fcimb.2015.00085.
11. Wright K.M., Friedland J.S. Differential regulation of chemokine secretion in tuberculous and staphylococcal osteomyelitis // J Bone Miner Res. - 2002;17(9):1680-1690. https://doi.org/10.1359/jbmr.2002.17.9.1680. Valour F., Rasigade J.P., Trouillet-Assant S., Gagnaire J., Bouaziz A., Karsenty J., Lacour C., Bes M., Lustig S., Bénet T., Chidiac C., Etienne J., Vandenesch F., Ferry T., Laurent F. Delta-toxin production deficiency in Staphylococcus aureus: a diagnostic marker of bone and joint infection chronicity linked with osteoblast invasion and biofilm formation // Clin Microbiol Infect. - 2015;21(6):568.e1-11. https://doi.org/10.1016/j.cmi.2015.01.026. Hamza T., Li B. Differential responses of osteoblasts and macrophages upon Staphylococcus aureus infection // BMC Microbiol. - 2014;14:207. https://doi.org/doihttps://doi.org/10.1186/s12866-014-0207-5.
12. Junka A., Szymczyk P., Ziółkowski G., Karuga-Kuzniewska E., Smutnicka D., Bil-Lula I., Bartoszewicz M., Mahabady S., Sedghizadeh P.P. Bad to the Bone: On In Vitro and Ex Vivo Microbial Biofilm Ability to Directly Destroy Colonized Bone Surfaces without Participation of Host Immunity or Osteoclastogenesis // PLoS One. - 2017;12(1):e0169565. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0169565.
13. Yamashita Y., Takeshita T. The oral microbiome and human health // J Oral Sci. - 2017;59(2):201-206. https://doi.org/10.2334/josnusd.16-0856.
14. Крюков А.И., Кунельская Н.Л., Гуров А.В., Изотова Г.Н., Старостина А.Е., Лапченко А.С. Клинико-микробиологическая характеристика дисбиотических изменений слизистой оболочки полости рта и ротоглотки. Медицинский совет. 2016;(6):32-35. [A.I. Kryukov, N.L. Kunel'skaya, A.V. Gurov, G.N. Izotova, A.E. Starostina, A.S. Lapchenko. Clinical and microbiological characteristics of dysbiotic changes in the mucous membrane of the oral cavity and oropharynx. Medical advice. 2016;(6):32-35. (In Russ.)]. https://doi.org/10.21518/2079-701X-2016-6-32-35
15. Zhang X., Lu Q., Liu T., Li Z., Cai W. Bacterial resistance trends among intraoperative bone culture of chronic osteomyelitis in an affiliated hospital of South China for twelve years // BMC Infect Dis. - 2019;19(1):823. https://doi.org/10.1186/s12879-019-4460-y.
16. Pigrau C., Almirante B., Rodriguez D., Larrosa N., Bescos S., Raspall G., Pahissa A. Osteomyelitis of the jaw: resistance to clindamycin in patients with prior antibiotics exposure // Eur J Clin Microbiol Infect Dis. - 2009;28(4):317-323. https://doi.org/10.1007/s10096-008-0626-z.
17. Кабанова А.А. Возбудитель воспалительных заболеваний челюстно-лицевой области в областных стационарах Беларуси. Медицинский вестник Северного Кавказа. 2017;12(4):424-427. [A.A. Kabanova. The causative agent of inflammatory diseases of the maxillofacial region in the regional hospitals of Belarus. Medical Bulletin of the North Caucasus. 2017;12(4):424-427. (In Russ.)]. https://doi.org/10.14300/mnnc.2017.12119
18. Токбергенова А.Т. Особенности развития гнойно-воспалительных процессов челюстно-лицевой области. Медицина и экология. 2018;(1):36-46. [A.T. Tokbergenova. Features of the development of purulent-inflammatory processes in the maxillofacial region. Medicine and ecology. 2018;(1):36-46. (In Russ.)]. https://cyberleninka.ru/article/n/osobennosti-razvitiya-gnoyno-vospalitelnyh-protsessov-chelyustnolitsevoy-oblasti
19. Мустафаев М.Ш., Кудаев Ш.С., Хараева З.Ф. Факторы персистенции микроорганизмов, выделенных при гнойно-воспалительных осложнениях переломов челюстных костей. Фундаментальные исследования. 2005;5:78-79. [M.Sh. Mustafaev, Sh.S. Kudaev, Z.F. Kharaeva. Persistence factors of microorganisms isolated in purulent-inflammatory complications of fractures of the jaw bones. Basic research. 2005;5:78-79. (In Russ.]. https://fundamental-research.ru/ru/article/view?id=6085
20. Митрофанова Н.Н., Лебедев М.В., Мельников В.Л., Купрюшин А.С. К вопросу антибиотикорезистентности этиологических агентов гнойно-воспалительных заболеваний у пациентов отделения челюстно-лицевой хирургии многопрофильного стационара. Медицинские науки. Клиническая медицина. 2017;43(3):49-56. [N.N. Mitrofanova, M.V. Lebedev, V.L. Mel'nikov, A.S. Kupryushin. On the issue of antibiotic resistance of etiological agents of purulent-inflammatory diseases in patients of the department of maxillofacial surgery of a multidisciplinary hospital. Medical Sciences. Clinical medicine. 2017;43(3):49-56. (In Russ.)]. https://doi.org/10.21685/2072-3032-2017-3-6
21. Нестеров А.В., Лебедев М.В., Захарова И.Ю. Частота и структура гнойно-воспалительных заболеваний челюстно-лицевой области (по материалам отделения челюстно-лицевой хирургии областной клинической больницы им. Н. Н. Бурденко). Вестник Пензенского государственного университета. 2017;17(1):65-72. [A.V. Nesterov, M.V. Lebedev, I.Yu. Zaharova. The frequency and structure of purulent-inflammatory diseases of the maxillofacial region (based on the materials of the Department of Maxillofacial Surgery of the Regional Clinical Hospital named after N. N. Burdenko). Bulletin of the Penza State University. 2017;17(1):65-72. (In Russ.)]. https://cyberleninka.ru/article/n/chastota-i-struktura-gnoyno-vospalitelnyh-zabolevaniy-chelyustno-litsevoy-oblasti-po-materialam-otdeleniya-chelyustno-litsevoy
22. Миронова А.В., Коршукова О.А. Факторы вирулентности энтерококков. Здоровье. Медицинская экология. Наука. 2015;60(2):73-78. [A.V. Mironova, O.A. Korshukova. Enterococcal virulence factors. Health. Medical ecology. The science. 2015;60(2):73-78. (In Russ.)]. https://applied-research.ru/ru/article/view?id=6587
23. Spyropoulou V., Dhouib Chargui A., Merlini L., Samara E., Valaikaite R., Kampouroglou G., Ceroni D. Primary subacute hematogenous osteomyelitis in children: a clearer bacteriological etiology // J Child Orthop. - 2016;10(3):241-246. https://doi.org/10.1007/s11832-016-0739-3.
24. Nishitani K., Sutipornpalangkul W., de Mesy Bentley K.L., Varrone J.J., Bello-Irizarry S.N., Ito H., Matsuda S., Kates S.L., Daiss J.L., Schwarz E.M. Quantifying the natural history of biofilm formation in vivo during the establishment of chronic implant-associated Staphylococcus aureus osteomyelitis in mice to identify critical pathogen and host factors // J Orthop Res. - 2015;33(9):1311-1319. https://doi.org/10.1002/jor.22907.
25. Mariani B.D., Martin D.S., Chen A.F., Yagi H., Lin S.S., Tuan R.S. Polymerase Chain Reaction molecular diagnostic technology for monitoring chronic osteomyelitis // J Exp Orthop. - 2014;1(1):9. https://doi.org/10.1186/s40634-014-0009-6.
26. Ferroni A., Al Khoury H., Dana C., Quesne G., Berche P., Glorion C., Péjin Z. Prospective survey of acute osteoarticular infections in a French paediatric orthopedic surgery unit // Clin Microbiol Infect. - 2013;19(9):822-828. https://doi.org/10.1111/clm.12031.
27. Brakstad O.G., Aasbakk K., Maeland J.A. Detection of Staphylococcus aureus by Polymerase Chain Reaction Amplification of the nuc // Gene J Clin Microbiol. - 1992;30(7):1654-1660. https://doi.org/10.1128/jcm.30.7.1654-1660.1992.
28. Shibata S., Tanizaki R., Watanabe K., Makabe K., Shoda N., Kutsuna S., Nagamatsu M., Oka S., Ohmagari N. Escherichia coli Vertebral Osteomyelitis Diagnosed According to Broad-range 16S rRNA Gene Polymerase Chain Reaction (PCR) // Intern Med. - 2015;54(24):3237-3240. https://doi.org/10.2169/internalmedicine.54.5066.
